脆性X染色體綜合征(Fragile X syndrome, FXS),是導(dǎo)致智力障礙最常見的遺傳性因素,也是自閉癥的最高單基因致病因素,發(fā)病率僅次于21-三體綜合征。致病原因是X染色體上Fmr1基因發(fā)生突變,導(dǎo)致維持腦部正常神經(jīng)傳導(dǎo)的脆性X智力低下蛋白(FMRP)制造量減少或缺乏。臨床表現(xiàn)為智力低下、語(yǔ)言障礙、行為異常、發(fā)育遲緩、面容特殊等,并伴有孤獨(dú)癥、自閉癥、癲癇等癥狀。一旦發(fā)病,無有效治療手段,給家庭帶來沉重的心理和經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)。
圖片來源:CDC
2019年2月11日,《Nature Neuroscience》刊登了威斯康星大學(xué)麥迪遜分校Zhao Xinyu團(tuán)隊(duì)的最新研究工作[1],他們發(fā)現(xiàn)了線粒體融合可以改善FMRP缺失導(dǎo)致的神經(jīng)元發(fā)育受損,Htt可以介導(dǎo)FMRP調(diào)控線粒體融合和樹突成熟,提示了FMRP和HTT在FXS發(fā)病機(jī)制中的相互作用,提高了人們對(duì)該領(lǐng)域的認(rèn)知。
Zhao Xinyu 圖片來源:
University of Wisconsin-Madison
結(jié)果
1、FMRP對(duì)神經(jīng)細(xì)胞的成熟過程至關(guān)重要
首先,作者通過DCX-CreERT2鼠(DCX啟動(dòng)子誘導(dǎo)表達(dá)Cre酶)、TdT reporter鼠(Cre依賴表達(dá)tdTomato紅色熒光蛋白的report鼠)以及Fmr1loxp/+鼠雜交獲得cKO鼠(tamoxifen誘導(dǎo)條件性敲除FMRP鼠,圖1a)。他們對(duì)6周齡的cKO鼠和對(duì)照鼠注射tamoxifen(TAM),并取注射后3d、7d、14d、28d、56d(對(duì)應(yīng)于新生神經(jīng)元發(fā)育的關(guān)鍵階段)的組織進(jìn)行分析[2](圖1b),發(fā)現(xiàn)TAM誘導(dǎo)Cre重組酶在DCX+細(xì)胞中表達(dá),導(dǎo)致FMRP在DCX+細(xì)胞中的選擇性缺失(圖1d-e)。
隨后,他們對(duì)海馬齒狀回顆粒下層(SGZ)的tdT+細(xì)胞數(shù)進(jìn)行量化(圖1c),結(jié)果發(fā)現(xiàn),F(xiàn)MRP的選擇性缺失,使未成熟神經(jīng)元數(shù)量在最初階段有一個(gè)短暫的增加,而在發(fā)育成熟的最后階段則顯著性減少,最終導(dǎo)致新成熟神經(jīng)元數(shù)量減少(圖1f-m)。
圖1 FMRP選擇性缺失影響神經(jīng)元的發(fā)育過程
接下來,作者在FMRP-cKO鼠(Fmr1loxp/y)和FMRP-cON鼠(Fmr1loxp-Neo/y)[3]的DG區(qū)注射retro-pDcx-Cre和retro-flip-GFP混合病毒(圖2a-c),結(jié)果發(fā)現(xiàn),與WT鼠相比,注射后28天,cKO鼠的DCX+新生神經(jīng)元樹突復(fù)雜性、總長(zhǎng)度、分支點(diǎn)及端點(diǎn)的數(shù)量顯著降低;而在cON鼠中,由于FMRP恢復(fù),改善了cON鼠的DCX+神經(jīng)元樹突形態(tài)的缺陷(圖2d-h)。這提示了在DCX+新生神經(jīng)元中FMRP的表達(dá)對(duì)樹突成熟的重要性。
進(jìn)一步,為了評(píng)估未成熟神經(jīng)元中FMRP缺失對(duì)新生神經(jīng)元突觸傳遞的功能影響,他們?cè)赾KO鼠的DG區(qū)注射retro-hSyn-Cre-GFP病毒,4-5周后,記錄GFP+神經(jīng)元的誘發(fā)動(dòng)作電位(AP)和微小自發(fā)性興奮性突觸后電流(mEPSCs),結(jié)果表明,未成熟神經(jīng)元中FMRP的缺失會(huì)影響其接受興奮性傳遞的能力(圖2i-n)。這些結(jié)果提示了,F(xiàn)MRP在神經(jīng)細(xì)胞成熟過程中的重要作用。
圖2 未成熟神經(jīng)元中FMRP缺失導(dǎo)致神經(jīng)元發(fā)育受損
2、FMRP缺失影響代謝過程
為了研究FMRP調(diào)控新生神經(jīng)元發(fā)育成熟的分子機(jī)制,作者將Fmr1-KO小鼠和Dcx-DsRed轉(zhuǎn)基因鼠進(jìn)行雜交[4]。用熒光激活細(xì)胞分選技術(shù)(FACS)分離小鼠DG區(qū)中的DsRed+細(xì)胞后(圖3a,b)。轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析出了與代謝相關(guān)的差異基因(圖3c,d)。神經(jīng)代謝高度依賴線粒體功能[5],作者的研究發(fā)現(xiàn),從Fmr1-KO鼠分離的海馬神經(jīng)元中,參與線粒體功能的幾個(gè)差異基因的表達(dá)水平發(fā)生了變化,為證明這種變化與FMRP缺失有關(guān),他們檢測(cè)了硝基酪氨酸水平發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,cKO小鼠的tdT+神經(jīng)元的硝基酪氨酸水平升高(圖3e,f)。
隨后,作者在Fmr1-KO鼠和WT鼠的DG區(qū)注射Retro-pCAG-mitoDsRed病毒來觀察新生神經(jīng)元中線粒體形態(tài)(圖3g),結(jié)果發(fā)現(xiàn),F(xiàn)MRP缺失的未成熟神經(jīng)元中線粒體碎片較多(圖3h,i)。這些結(jié)果提示了,未成熟神經(jīng)元中FMRP表達(dá)缺失會(huì)顯著影響代謝過程,這可能是由線粒體功能障礙引起的。
圖3 FMRP缺失影響代謝過程
3、線粒體融合改善FMRP缺失神經(jīng)元的成熟過程
接下來,科研人員用mitoDsRed和GFP轉(zhuǎn)染從Fmr1-KO鼠分離出的神經(jīng)元,結(jié)果發(fā)現(xiàn),與WT相比,Fmr1-KO鼠神經(jīng)元中線粒體的縱橫比、膜電位均顯著降低(圖4a-d),這提示了FMRP缺失會(huì)損害小鼠神經(jīng)元線粒體功能。
線粒體可以通過分裂或融合發(fā)生頻繁的形態(tài)學(xué)變化[6],因此他們假設(shè)FMRP缺失的神經(jīng)元線粒體縱橫比降低可能是由于裂變?cè)黾踊蛉诤蠝p少導(dǎo)致的,隨后作者用光電開關(guān)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證這一假設(shè),即Fmr1-KO鼠神經(jīng)元中線粒體融合減少(圖4e-h)。
圖4 FMRP缺失的未成熟神經(jīng)元中線粒體融合受損
進(jìn)一步,他們用M1(可促進(jìn)線粒體融合,恢復(fù)線粒體管狀網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu))處理Fmr1-KO和WT鼠神經(jīng)元,結(jié)果發(fā)現(xiàn),線粒體融合的恢復(fù)顯著改善了FMRP缺乏導(dǎo)致的樹突成熟度受損現(xiàn)象(圖5)。
圖5 增強(qiáng)線粒體融合可改善FMRP缺陷的未成熟神經(jīng)元
4、HTT缺失導(dǎo)致線粒體融合基因表達(dá)減少以及樹突成熟度受損
接下來,作者研究了FMRP調(diào)控線粒體融合的機(jī)制。他們從BioGRID數(shù)據(jù)庫(kù)中找出最可能參與未成熟神經(jīng)元線粒體FMRP調(diào)控的靶點(diǎn)基因-Htt,隨后,評(píng)估了未成熟神經(jīng)元中HTT蛋白表達(dá)、Htt mRNA表達(dá)水平,結(jié)果發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,cKO鼠DG區(qū)中tdT+神經(jīng)元的HTT免疫染色強(qiáng)度明顯降低(圖6a,b),此外,Fmr1-KO鼠DG區(qū)和原代海馬神經(jīng)元的Htt mRNA水平均顯著性降低(圖6c,d)。
進(jìn)一步,作者用慢病毒介導(dǎo)的shRNA感染海馬神經(jīng)元,干擾Htt,發(fā)現(xiàn)病毒感染神經(jīng)元HTT的mRNA水平和蛋白水平以及MFN2(線粒體融合蛋白2,介導(dǎo)線粒體外膜融合)和OPA1(視神經(jīng)萎縮1,介導(dǎo)線粒體內(nèi)膜融合)的mRNA水平和蛋白水平均顯著降低(圖6e-l),此外,HTT敲低的海馬神經(jīng)元的樹突狀復(fù)雜性、長(zhǎng)度以及節(jié)點(diǎn)數(shù)量也顯著降低(圖6m-p)。這些數(shù)據(jù)提示了,未成熟神經(jīng)元中HTT缺失導(dǎo)致線粒體融合基因表達(dá)減少以及樹突成熟度受損,這與FMRP缺失導(dǎo)致的發(fā)育神經(jīng)元發(fā)育受損表型一致。
圖6 HTT缺失導(dǎo)致線粒體融合基因表達(dá)減少以及樹突成熟度受損
5、HTT表達(dá)增強(qiáng)可改善FMRP缺失神經(jīng)元的線粒體融合
為了檢驗(yàn)Htt降低是否與FMRP缺失神經(jīng)元中線粒體缺陷有關(guān),作者利用CRISPR/dCas9技術(shù)進(jìn)行內(nèi)源基因轉(zhuǎn)錄激活[7]。他們將設(shè)計(jì)的十條sgRNA靶序列轉(zhuǎn)染Neuro2A細(xì)胞,篩選出能使內(nèi)源性Htt mRNA水平和HTT蛋白水平表達(dá)顯著性增強(qiáng)的sgRNA(圖7a,b)。隨后科研人員用篩選出來的sgRNA和dCas9-V164感染Fmr1-KO和WT鼠原代海馬神經(jīng),結(jié)果發(fā)現(xiàn),KO和WT鼠神經(jīng)元中HTT蛋白表達(dá)水平就顯著升高,更重要的是,KO小鼠神經(jīng)元中HTT水平恢復(fù)到WT的水平(圖7d)。此外,內(nèi)源性Htt基因的激活提高了Fmr1-KO鼠神經(jīng)元中線粒體的縱橫比、降低了硝基酪氨酸水平(圖7d,f),并改善了神經(jīng)元的樹突復(fù)雜度(圖8a-c)。提示了,HTT是FMRP調(diào)控線粒體功能和神經(jīng)元成熟的核心。
圖7 HTT表達(dá)增強(qiáng)可改善FMRP缺失神經(jīng)元的線粒體融合
6、增強(qiáng)線粒體融合可改善Fmr1-KO小鼠行為缺陷
上述研究發(fā)現(xiàn)M1可以改善Fmr1-KO鼠神經(jīng)元中線粒體形態(tài)(圖4),接下來,作者利用曠場(chǎng)實(shí)驗(yàn)(圖8e)、定位測(cè)試(圖8f)以及社會(huì)新奇度測(cè)試(圖8g)三種行為學(xué)檢測(cè)進(jìn)一步驗(yàn)證M1可以改善Fmr1-KO鼠的行為缺陷(圖8d-g)。
最后,他們?cè)诔赡闣T小鼠的DG區(qū)注射慢病毒介導(dǎo)的shRNA敲除HTT,并在21天后進(jìn)行行為學(xué)檢測(cè)(圖8h)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),HTT敲除小鼠表現(xiàn)出空間記憶和交往能力受損,而M1則可以改善這一現(xiàn)象(圖8i-k)。這表明缺乏FMRP或HTT的小鼠行為缺陷可以通過一種促進(jìn)線粒體融合的化合物來進(jìn)行修復(fù)。
圖8 增強(qiáng)線粒體融合可改善Fmr1-KO小鼠行為缺陷
結(jié)論
FXS是一種X連鎖遺傳病,是最常見的遺傳性智力障礙疾病。近年來,人們對(duì)FXS的關(guān)注逐漸增加。本文借助于大量病毒標(biāo)記,發(fā)現(xiàn)FMRP缺失神經(jīng)元的發(fā)育過程受損,而線粒體融合改善這一現(xiàn)象。隨后,使用CRISPR/dCas9技術(shù)靶向激活內(nèi)源性Htt基因后,恢復(fù)了Fmr1-KO鼠神經(jīng)元的線粒體融合以及樹突成熟缺陷。最后行為學(xué)檢測(cè)發(fā)現(xiàn)線粒體融合可以改善Fmr1-KO鼠的行為缺陷。為FXS的治療提供了理論依據(jù)。
本內(nèi)容版權(quán)歸和元上海所有
如需轉(zhuǎn)載請(qǐng)?jiān)谖恼铝粞詤^(qū)申請(qǐng)轉(zhuǎn)載
未經(jīng)授權(quán)不得以轉(zhuǎn)載或其他任何形式使用
和元上海一直關(guān)注神經(jīng)、代謝、腫瘤科學(xué)領(lǐng)域的重大研究進(jìn)展,為神經(jīng)生理、病理研究提供最新工具和研究方案,助力臨床轉(zhuǎn)化和基因治療!
參考文獻(xiàn):
[1]Xinyu Zhao et al. Reduced mitochondrial fusion and Huntingtin levels contribute to impaired dendritic maturation and behavioral deficits in Fmr1-mutant mice. Nat Neurosci.(2019).
[2]Kempermann, G., Song, H. & Gage, F. H. Neurogenesis in the AdultHippocampus. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 7, a018812 (2015).
[3]Guo, W. et al. Ablation of Fmrp in adult neural stem cells disrupts hippocampus-dependent learning. Nat. Med. 17, 559–565 (2011).
[4]Gao, Y. et al. Integrative single-cell transcriptomics reveals molecular networks defining neuronal maturation during postnatal neurogenesis. Cereb. Cortex 27, 2064–2077 (2017).
[5]Devine, M. J. & Kittler, J. T. Mitochondria at the neuronal presynapse in health and disease. Nat. Rev. Neurosci. 19, 63–80 (2018).
[6]Schon, E. A. & Przedborski, S. Mitochondria: the next (neurode)generation. Neuron 70, 1033–1053 (2011).
[7]Konermann, S. et al. Genome-scale transcriptional activation by an engineered CRISPR-Cas9 complex. Nature 517, 583–588 (2015).
聯(lián)系客服