原代細胞分離的方法有多種，最常用的是機械解離細胞法、酶學解離細胞法以及螯合劑解離細胞法，下面我們就介紹酶解聚方法獲得純化的原代細胞。
（1）胰蛋白酶 純化法
●在去除不需要的組織后，使用無菌的解剖刀和剪子把剩余的組織切成3~4 mm小片，通過懸浮在無鈣鎂的平衡鹽溶液中清洗組織碎片。讓組織碎片沉淀，去除上清液。重復(fù)清洗2到3次。
●將盛有組織碎片的容器置于冰上，去除殘留的上清液。加入0.25%溶解在無鈣鎂的平衡鹽溶液中的胰蛋白酶（100 mg組織加入1ml 胰蛋白酶）。
●在4℃孵育6到18小時，使幾乎沒有胰蛋白酶活性的酶盡可能滲透進去。
●移棄組織碎片中的胰蛋白酶，在37℃孵育包含殘留胰蛋白酶的組織碎片20到30分鐘。
●在組織碎片加入熱的完全培養(yǎng)基，用移液管輕輕地分散組織。如果使用無血清培養(yǎng)基，要加入大豆胰蛋白酶抑制劑。
●通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)（100～200 mm）過濾，分散所有剩余組織。計數(shù)和接種細胞，進行培養(yǎng)。
（2）膠原酶純化法
●用無菌解剖刀和剪子把剩余組織切成3~4 mm小片，用Hanks'平衡液（HBSS）清洗組織碎片幾次。
●加入膠原酶（50～200單位/ml，溶解在HBSS中）。
●在37℃孵育4到18小時。加入3mM CaCl2增加解離效率。
●通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細胞懸液，以分離分散細胞、組織碎片和較大的碎片。如果需要進一步的解聚，在碎片中加入新鮮的膠原酶。
●通過離心在HBSS中清洗懸液幾次。
●再一次在培養(yǎng)基中懸浮細胞，計數(shù)和接種細胞，進行培養(yǎng)。
（3）Dispase純化法
●用無菌解剖刀和剪子把剩余組織切成3~4 mm小片，用不含鈣鎂的平衡鹽溶液清洗組織碎片幾次。
●加入Dispase（0.6～2.4單位/ml 溶解在無鈣鎂的平衡鹽溶液）
●在37℃孵育20分鐘到幾個小時。
●通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細胞懸液，以分離分散細胞、組織碎片和較大的碎片。如果需要進一步的解聚，在碎片中加入新鮮的Dispase。
●通過離心在平衡鹽溶液中清洗懸液幾次。
2. 分離細胞后，第一次傳代需要注意的問題：
●傳代培養(yǎng)時先觀察細胞的活性。
●細胞的活率應(yīng)該超過90%，密度控制在80%左右最佳
●對于無血清培養(yǎng)基，需要降低胰蛋白酶使用量。
以下細節(jié)一定要注意哦
（1） 移棄使用過的細胞培養(yǎng)基。
（2）使用不包含有鈣鎂的平衡鹽溶液或EDTA清洗細胞。在培養(yǎng)瓶背著細胞的一面加入清洗溶液，通過轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶1到2分鐘清洗細胞層，然后去除清洗液。
（3）加入胰酶消化，消化細胞與細胞，操作手法，試劑的效價有密切的關(guān)系，消化時應(yīng)注意觀察細胞形態(tài)，如細胞變得橢圓透亮，并且可以觀察到細胞與細胞間的間隙時，輕拍瓶身可以看見成流沙狀，即可中止消化，消化時盡量減少對細胞的吹打。
（4）當細胞完全分離時，垂直放置培養(yǎng)瓶，讓細胞流到培養(yǎng)瓶的底部。在培養(yǎng)瓶中加入完全培養(yǎng)基中止消化，計數(shù)并再次培養(yǎng)細胞。
（5）對于無血清培養(yǎng)基，加入大豆胰蛋白酶抑制劑。通常使用1∶1（v∶v）0.25 mg/ml胰蛋白酶抑制劑到胰蛋白酶中將抑制胰蛋白酶活性。
上海中喬新舟生物科技有限公司
1、原代細胞：ScienCell（中國區(qū)正規(guī)一級代理）人源和動物源各種原代細胞。
2、培養(yǎng)基：原代細胞專用低血清、無血清、無異源蛋白無動物成分培養(yǎng)基。
3、細胞培養(yǎng)試劑：胎牛血清、原代細胞轉(zhuǎn)染試劑盒、細胞實驗檢測試劑盒、細胞生長因ELISA試劑盒、定量PCR芯片試劑盒、DNA/RNA及細胞裂解物等。
4、細胞系（株）：種類豐富（1000余種），已通過STR鑒定；提供細胞株完全培養(yǎng)基。
5、自研產(chǎn)品：支原體檢測/清除試劑盒、端粒酶檢測試劑盒、人源/動物源ELISA試劑盒等系列產(chǎn)品
6、技術(shù)服務(wù)：綠/紅色熒光蛋白標記、熒光素酶標記、慢病毒介導(dǎo)基因沉默或過表達及穩(wěn)轉(zhuǎn)株的構(gòu)建，細菌基因敲除、細胞基因敲除、小鼠基因敲除、血管生成功能學實驗。
